Захисний ефект Jiujiuguiyi, гомологічної формули ліків і їжі, на мишей із гострим алкогольним отруєнням

Для отримання додаткової інформації:emily.li@wecistanche.com

Основні моменти У цьому дослідженні була розроблена нова складена китайська фітотерапія Jiujiuguiyi з використанням теорії гомології медицини та їжі. Формула спрямована назахищаючивпечінка, знімаючи аномальну збудливість центру та одночасно покращуючи м’язову відсталість. Була побудована модель гострої алкогольної інтоксикації у мишей, потім проведено етіологічний тест і біохімічний тест для перевірки ефективності формули в різних препаратах. Результати свідчать про те, що JJGY може захистити мишей від гострої алкогольної інтоксикації за допомогою кількох механізмів, забезпечуючи новий спосіб розробки гомологічної їжі для ліків проти алкоголізму.

Цистанхея корисна для захисту печінки

Анотація

Довідка: на сьогодні гостра алкогольна інтоксикація стала третьою суспільною проблемою Китаю. іанти-сп'янінняпродукти, в основному спрямовані на підвищення активностіферментипричетний до алкоголюметаболізм, який є єдиним механізмом, який може прискорити метаболізм алкоголю. Таким чином, нами розроблена нова формула Jiujiuguivi (JJGY), яка може одночасно захистити печінку, зменшити аномальну збудливість центру та покращити затримку м’язів. Методи. Модель гострої алкогольної інтоксикації була встановлена ​​шляхом внутрішньошлункового введення 0.12 мл/10 г 50-відсоткового алкоголю мишам, JJGY вводили перорально (зондове) один раз на день протягом 20 послідовних днів до встановлення гострого сп’яніння. алкогольна модель. Мишей випадковим чином розділили на 8 груп по 8 у кожній: холоста контрольна група (CON), модельна група (M), група позитивного контролю Haiwangjinzun (HWJZ), експериментальні групи (AL, AH, BL.BH, AB). Гігант, повзаючий час по рота-стержню, діяльність аспартатуамінотрансферази(АСТ), аланінамінотрансферази (АЛТ) ісупероксиддисмутаза(SOD) в обохпечінкаі сироватці крові, алкогольдегідрогеназу (АДГ) і альдегіддегідрогеназу (АЛДГ), глутатіонпероксидазу (GSH-Px) в печінці, а також НЕ фарбування зрізів печінки, утворення малонового діальдегіду (МДА) в сироватці крові визначали після гострої алкогольної інтоксикації. . Результати: порівняно з модельною групою, JJGY значно знизив активність AST і ALT у печінці та сироватці крові та активність MDA у сироватці. Водночас він підвищив рівні АДГ та АЛДГ у печінці, а також печінкову та серозну активність СОД, що вказує на більш ефективний метаболізм алкоголю та меншу травму печінки. Результати фарбування HE також довели, що JJGY може зменшитиалкоголікпечінкаклітини. iniuryі ефект був більш очевидним у групі, яка отримувала ліки перед прийомом алкоголю. Крім того, JJGY значно подовжив час повзання на ротаційній вудилищі та покращив ходу мишей, і ефект виявився кращим, ніж широко використовуваний оздоровчий продукт Haiwanginzun. Висновки; Це дослідження показує, що JJGY може захиститипечінка, знімають аномальну збудливість центру і покращують м'язову загальмованість після гострого алкогольного сп'яніння. Його ефект захисту печінки, ймовірно, пов’язаний з модуляцією метаболізму алкоголю та антиоксидантних ферментів.

Ключові слова: Jiujiuguiyi(JJGY), гостра алкогольна інтоксикація мишей, лікарська та харчова гомологія, етологічний тест.

Фон

Гостре алкогольне отруєння викликається одноразовим накопиченням етанолу, що перевищує швидкість окислення в організмі людини[1]. Алкогольне отруєння – це мультисистемне захворювання, яке вражає весь організм, а не тільки йогопечінка[2]. Алкоголь може легко пройти через гематоенцефалічний бар’єр і впливати на кору головного мозку, порушуючи тонкий баланс між у-аміномасляною кислотою (ГАМК) [3], викликаючи гальмування підкіркового центру, мозочка, довгастого мозку, вазомоторного центру та дихальний центр [4]. У важких випадках можлива недостатність дихання та кровообігу. Алкогольна інтоксикація також може призвести до алкогольної міопатії та аміотрофії [5-7], що призводить до м’язової слабкості та болю протягом тижнів або місяців [8]. Крім того, вживання алкоголю може безпосередньо пошкодити ліпопротеїновий шар слизової оболонки шлунка, викликаючи пошкодження бар’єру слизової оболонки шлунка 19]. За останні роки через соціальні потреби та підвищений стрес у житті кількість споживачів алкоголю в Китаї перевищила 500 мільйонів. Алкоголь і алкоголізм стали третьою проблемою охорони здоров'я в усьому світі [10]. Після серцево-судинних захворювань і раку |11.

Традиційна китайська медицина (ТКМ) має потенційну терапевтичну цінність у профілактиці та лікуванні алкоголізму [12]. Століттями лікарські трави та харчові добавки використовувалися в Китаї та Східній Азії для профілактики та лікування захворювань, пов’язаних з алкоголем [13]. У цьому дослідженні ми розробили нову складну китайську фітотерапію під назвою Jiaiuguiyi (JGY), яка може захиститипечінка, знімають аномальну збудливість центру та покращують затримку м’язів. Щоб точніше зменшити гостру алкогольну інтоксикацію в різні періоди, ми розробили дві різні формули--Формула A призначена для прийому перед вживанням алкоголю, а Формула B призначена для прийому після вживання алкоголю [14]. Формула А містить карнозин, коренеплід пуерарія, насіння ховенії, екстракт какао-чаю семені Зізіфі Спіноза, сухе молоко та конжак фу, спрямовані на запобігання гострого алкогольного сп’яніння. Формула B містить карнозин, коренеплід пуерарії, насіння ховенії, хризантему моріфоліамову, шипшину, кореневище імперативне та порію кокосову, зосереджуючись на покращенні симптомів гострого алкогольного сп’яніння [15].

Карнозин є низькомолекулярним антиоксидантом [16]. Puerariae radix і Semen Hovenia мають ефект протверезіння [17, 18] і супроводжуючий ефект.печінкафункція[19], відповідно до Compendium of Materia Medica. Повідомляється, що какао-чай здатний протистояти окисленню та запаленню [20]. І чай з какао, і сперма Ziziphi Spinosae [21] можуть заспокоїти розум. Сухе молоко і борошно конджаку спрямовані на захист слизової оболонки шлунка і зниження всмоктування алкоголю. Chrysanthemum morifolium, глід, Rhizoma imperative [22] і Poria cocos [23] можуть сприяти виведенню метаболітів алкоголю.

Щоб отримати доступ до функції .JJGY та визначити, чи є профілактика чи лікування більш ефективними, ми створили модель гострого алкогольного сп’яніння у мишей [24, 25].

Матеріали та методи

Ліки та основні реактиви

Puerariae radix (номер партії: 171103151), Semen Hovenia (номер партії: 170806301), Semen Ziiphi Spinosae (номер партії: 170800501), Chrysanthemum morifolium (номер партії: 171008681), шип (номер партії: 170902361), Rhizoma imperative (номер партії) : 170703411), Poria cocos (номер партії: 170905201) були придбані у Kangmei Pharmaceutical Co., Ltd. (Шеньчжень, Китай). Какао-чай був зібраний з гори Нанкун, округ Лунмен, провінція Гуандун. Борошно Kojaku (№ партії: XSD2018010205) було придбано у Qixiang Biotechnology Co., Ltd. (Гуанчжоу, Китай). Haiwangjinzun був придбаний у Neptunus Medicine Group Co. Ltd. (Шеньчжень, Китай). Формула A (масове співвідношення): Карнозин: Puerariae radix: Semen Hovenia: екстракт какао-чаю: Semen Ziziphi Spinosae: сухе молоко: конжакове борошно =6: 15:15:9:12:9:2

Формула B (масове співвідношення): Карнозин: Puerariae radix: Semen Hovenia: Chrysanthemum morifolium Глід: Rhizoma imperative: Poria cocos =6:15:15:9:9:9:9 Додайте 8 разів води та варіть вищевказане -зазначені трави 2 рази, кожен раз по 1 год. Концентруйте фільтрат до рідини, еквівалентної 1 г/мл сирої лікарської речовини, і охолодіть його для подальшого використання.

Тварини

Мишей SPF Kunming (18-22 г, самці) було отримано з Guangdong Medical Laboratory Animal Center (ліцензія: SCXK 2013-0002). Усі тварини акліматизувалися у середовищі утримання з 23±2 градусами та 12:12 годинним циклом світло-темрява протягом одного тижня перед експериментами. Їх утримували на стандартній їжі та воді ad libitum. Усі процедури догляду за тваринами та експериментальні процедури були схвалені Комітетом з етики лабораторних тварин Університету Цзінань і відповідали Керівництву Національного інституту охорони здоров’я щодо догляду та використання лабораторних тварин (7-е видання, США).

Лабораторний апарат

Інструмент із міткою ферментів (MK3, Lab system, Фінляндія), система надчистої води (Milli Q Plus, Millipore, США), морозильний мікротом (Leica CM1950, Leica, Німеччина), оптичний мікроскоп (Olympus BX50, Olympus, Японія), електронний ваги (BS 210S, Sartorius, Німеччина), ротаційний аналізатор (ZH, Anhui Zhenghua Biologic Apparatus Facilities, Китай), система аналізу на подіумі (catwalk XT 9, Noldus, Голландія), гомогенізатор (IKA labortechnik, Standen, Німеччина), охолоджений центрифуга (3-18K, Sartorius, Німеччина)

Група та адміністрація

Мишей SPF Куньмін ({{0}} г) випадковим чином розділили на 8 груп по 8 у кожній: холоста контрольна група (CON), модельна група (M), Haiwangjinzun (HWJZ) група позитивного контролю, експериментальна група (EP ), що містить групу високої дози формули A (AH), групу низької дози формули A (AL), групу високої дози формули B (BH), групу низької дози формули B (BL), групу формули A плюс групу формули B (AB). Мишам у цих групах вводили 0.1 мл/10 г очищеної води для груп CON і M, Haiwangjinzun (3 г/10 мл перед введенням алкоголю) для групи позитивного контролю та Формули A та/або B (група з високою дозою, {{20}}.04 г/10 г; група з низькою дозою, { {36}}.02 г/10 г) для групи ЕР окремо. На 21 день. мишам у групах CON, M, AL та AH вводили 0,12 мл/10 г 50-відсоткового спирту через 30 хвилин після введення 0,1 мл/10 г Формули A (dd H, O). Мишам у групах BH і BL вводили 0,1 мл/10 г формули B через 30 хвилин після введення 0,12 мл/10 г 50-відсоткового спирту. Мишам у групі АВ вводили 0,12 мл/10 г 50-відсоткового спирту через 15 хвилин після введення 0,1 мл/10 г Формули А та за 15 хвилин до введення Формули В.

Аналіз етології

Через 30 хвилин після введення мишей поміщали в систему аналізу на подіумі. Після того, як навколишнє середовище було адаптовано, розпочався тест, і хода була записана. Кожну групу мишей тестували по черзі, щоб уникнути впливу часу на спонтанну активність мишей. Потім мишей поміщали на ротаційно-стрижневий аналізатор і тест починали після адаптації середовища (1 хв). Реєстрували час повзання мишей на поворотному стрижні, і кожну мишу тестували 3 рази. Кожну групу мишей тестували по черзі, щоб уникнути впливу часу на спонтанну активність мишей.

Біохімічний тест

Після завершення етнологічного аналізу миші голодували протягом 12 годин. Потім була зібрана кров напередодні, а мишей принесли в жертвупечінка. Кров центрифугували при 2500 об/хв протягом 15 хв і збирали сироватку. Активність сироваткової аспартат-трансамінази (AST), аланінамінотрансферази (ALT), малонового діальдегіду (MDA) і супероксиддисмутази (SOD) визначали наборами, наданими Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute. Частинапечінкавикористовували для гістологічного дослідження печінки, а інші гомогенізували у співвідношенні 1:9 у холодному фізіологічному розчині (NS) і центрифугували при 3000 об/хв протягом 15 хв, а супернатант збирали для аналізу трансамінази (AST), аланінамінотрансферази (ALT). ), супероксиддисмутази (SOD), глутатіонпероксидази (GSH-XP), алкогольдегідрогенази (ADH) і альдегіддегідрогенази (ALDH) за допомогою наборів, наданих Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute. Усі тести проводили згідно з інструкціями до набору.

Спостереження за гістопатологічними змінами

Решту печінки мишей з різних груп фіксували в 10% розчині формаліну протягом 48 годин. Після стандартних етапів замороженого зрізу та фарбування гематоксилін-еозином (HE) готували стандартні зрізи для фарбування HE та гістопатологічні зміни спостерігали під оптичним мікроскопом.

Статистичний аналіз

Дані етіологічного тесту були виражені як середнє ± SEM. Решта даних виражено як середнє ± SD. Усі дані були проаналізовані за допомогою одностороннього дисперсійного аналізу за допомогою програмного забезпечення Graphpad Prism 5 та P<0.05 was="" considered="" statistically="">

Результати

Вплив JJGY на активність печінкових ферментів

Підвищення печінкових АСТ і АЛТ зазвичай свідчить протравмазпечінка. На малюнку 1 порівняно з модельною групою печінкова активність АСТ і АЛТ при АГ. У групах BH.AB і HWJZ було значно знижено (рис. 1а, 1b). Активність АСТ у групі АГ знизилася на 18,32 Од/мл порівняно з модельною групою, досягнувши 37,08 Од/мл, а активність АЛТ досягла 119,20 Од/мл. мл краще, ніж Haiwangjinzun (AST 39,40 U/мл, ALT 137,7 U/мл).

АДГ і АЛДГ утворюють етанолдегідрогеназну систему, яка бере участь у метаболізмі етанолу в йойо для людей і тварин. Як ключовий фермент для метаболізму алкоголю з коротким ланцюгом в організмі, він відіграє важливу роль у багатьох фізіологічних процесах, наприклад, є основним способом метаболізму алкоголю впечінка. Після прийому алкоголю рівні АДГ і АЛДГ у мишей (рис. lc, Id) значно зросли, що можна отримати з різниці між контрольною групою та модельною групою. Групи AH, BL, BH і AB отримали вищі рівні ферменту. порівняно з модельною групою і навіть групою HWJZ, що свідчить про вищу ефективність метаболізму алкоголю.

GSH-PX може вивести перекис водню в організмі. На печінкову активність GSH-PX лікування BLand BH мало вплинуло. Проте групи AL AH, AB і HWJZ показали значне зростання (P< 0.001),="" compared="" with="" the="" model="" group="" (figure="" le),="" with="" the="" ah="" group="" (1324u/l)="" increased="" the="">

СОД може спеціально видаляти супероксидні аніонні радикали, що утворюються в процесі окислювального метаболізму в організмі, таким чином затримуючи старість і посилюючи аутоімунітет. Результати активності печінкової СОД показали, що групи AH, BL та AB значно відрізнялися від модельної групи (P<0.001) and="" the="" degree="" was="" greater="" than="" the="" hwjz="" group="" (figure="">

Беручи до уваги наведені вище біохімічні дані, група AH і AB була кращою за групу HWJZ, що вказує на те, що JJGY має певний ефект у зменшенні пошкодження клітин печінки та посиленні метаболізму алкоголю та перевершує позитивний препарат Haiwangjinzun.

Вплив JJGY на печінкову тканину

Результати фарбування HE зрізів печінки в різних групах показані на малюнку 2. У контрольній групі структура тканини печінки була повною та відображеною, і не було значної дегенерації, некрозу або запальної клітинної інфільтрації. Однак у модельній групі структура тканини печінки мишей значно змінилася-- гепатоцити були набряклі та деформовані, локально спостерігалися некрози та жирові вакуолі різного розміру. Алкогольне ураження печінки значно покращилося в групах AL, AH та HWJZ, оскільки морфологія більшості клітин залишалася нормальною. Порівняно з результатом групи, яка отримувала ліки до алкоголю, у групі BL і BH спостерігалися локальний некроз, деформація гепатоцитів і запальна інфільтрація в печінці. Крім того, вищі дози кожної формули призвели до більшого ефекту захисту клітин печінки від алкогольного ураження.

Рисунок 1. Вплив JJGY на печінкові AST, ALT, ADH, ALDH, GSH-PX і SOD

Печінку збирали у мишей із гострим алкогольним отруєнням після етіологічного дослідження, потім їх гомогенізували у співвідношенні 1:9 у холодному фізіологічному розчині (NS) і центрифугували при 3000 об/хв протягом 15 хв, а супернатант збирали протягом аналіз трансамінази (AST, 1a), аланінамінотрансферази (ALT, 1b), глутатіонпероксидази (GSH-PX, 1e), супероксиддисмутази (SOD, 1f), алкогольдегідрогенази (ADH, 1c) та альдегіддегідрогенази (ALDH, 1d) із системою флуоресцентних мікропланшетів Mk3\. Порівняно з контрольною групою, ** P < 0,01,="" ***=""><0.001, compared="" with="" model="" group,="" #="" p="" <="" 0.05,="" ##="" p="" <="" 0.01,="" ###="" p="" <="">

Рисунок 2. Вплив JJGY на печінкову тканину

Печінку мишей з різних груп фіксували в 10-процентному розчині формаліну і обробляли фарбуванням гематоксилін-еозином (HE). Готували стандартні зрізи фарбування HE та гістопатологічні зміни спостерігали під оптичним мікроскопом.

Вплив JJGY на серйозну активність ферментів

Ураження печінки також можна визначити за серозною активністю АСТ, АЛТ, МДА та СОД. На малюнку 3, за винятком груп AL і BL у тесті на активність АЛТ, серозна активність АСТ і АЛТ у всіх експериментальних групах має значні відмінності від модельної групи (Малюнки 3a, 3b). Найбільше зниження в групі АГ із серозною активністю АСТ і АЛТ, що досягає 41,33 Од/мл і 1,70 Од/мл, краще, ніж позитивний препарат Haiwangjinzun (АСТ 47,29 Од/мл, АЛТ 26,72 Од/мл). Порівняно з модельною групою серозний вміст MDA у всіх експериментальних групах і групі HWJZ значно знизився (рис. 3c, P < 0.001),="" а="" серйозна="" активність="" sod="" у="" al,="" ah="" ,="" групи="" bh="" ab="" і="" hwjz="" були="" значно="" збільшені="" (рисунок="" 3d,="" p=""><0,01 або="" p=""><0,001). активність="" сод="" у="" групі="" аг="" (317,8="" од/л)="" зросла="" більше,="" ніж="" у="" групі="" hwjz="" (281,3="" од/л).="" це="" вказує="" на="" те,="" що="" jjgy="" може="" ефективно="" зменшити="" пошкодження="" клітин="" печінки="" та="" перевершує="" позитивний="" препарат="">

Вплив JJGY на етологію

Тест на етологію може відображати аномальну збудливість центру і затримку м'язів. На малюнку 4 експериментальні групи та група HWJZ успішно збільшили час падіння, кут нахилу та швидкість гойдання, показуючи значну різницю з модельною групою. Серед них миші групи BL (P < 0.001)="" найдовше="" залишалися="" на="" ротаційно-стрижневому="" аналізаторі="" (рис.="" 4а).="" миші="" групи="" ah="" (p=""><0,001) мали="" найбільше="" покращення="" у="" candence="" (рис.="" 4b)="" і="" swing="" speed="" ​​(рис.="">

Рисунок 3. Вплив JJGY на сироваткові АСТ, АЛТ, МДА та СОД

Цільну кров збирали з орбіти мишей із гострим алкогольним отруєнням після етологічного тесту. Кров центрифугували при 2500 об/хв протягом 15 хв і збирали сироватку. Активність сироваткової аспартат-трансамінази (AST, 3a), аланінамінотрансферази (ALT, 3b), малонового діальдегіду (MDA, 3c) і супероксиддисмутази (SOD, 3d) аналізували за допомогою системи флуоресцентних мікропланшетів Mk3.

Рисунок 4. Вплив JJGY на координацію рухів

Після встановлення моделі гострого алкогольного сп’яніння мишей помістили на ротаційно-стрижневий аналізатор для реєстрації часу падіння (4a) після адаптації до середовища. Після тривалого відпочинку мишей помістили в систему аналізу на подіумі для запису частоти обертання (4b) і швидкості гойдання (4c) після адаптації до середовища. Порівняно з контрольною групою, ** P < 0.01,="" ***="" p="">< 0.{{10}}01,="" порівняно="" з="" модельною="" групою,="" #="" p="">< 0,05,="" ##="" p="">< 0,01,="" ###="" p=""><>

Як показано на малюнку 5, порівняно з модельною групою показники тривалості бігу, варіації швидкості ходьби та циклу кроків в експериментальних групах значно зменшилися. Миші групи AL мали найкраще покращення тривалості бігу (P < 0.001)="" і="" варіації="" швидкості="" ходьби="" (p="">< 0,01)="" (рис.="" 5a,="" 5b),="" тоді="" як="" миші="" групи="" al="" (p="">< 0,001)="" продемонстрували="" найбільше="" покращення="" у="" циклі="" кроків="" (рис.="" 5c).="" показове="" підсвічування="" в="" режимі="" синхронізації="" (рис.="" 5d)="" показує="" тривалість="" стояння="" та="" коливання="" кожної="" миші.="" хода="" мишей="" контрольної="" групи="" отримала="" очевидну="" регулярність,="" тоді="" як="" кінцівки="" мишей="" у="" модельній="" групі="" мали="" довший="" час="" контакту="" зі="" скляною="" пластиною="" та="" скоротили="" час="" підвішування,="" що="" свідчить="" про="" негативний="" вплив="" алкоголю="" на="" ходу.="" регулярність="" ходи="" експериментальної="" групи="" мала="" різний="" ступінь="" покращення,="" особливо="" групи="" аг.="" шаблони="" кроків="" (рис.="" 5e)="" показують="" порядок,="" у="" якому="" миші="" ставлять="" свої="" чотири="" лапи="" на="" землю.="" порівняно="" з="" контролем,="" шаблони="" кроків,="" які="" розпізнає="" система,="" були="" значно="" зменшені="" в="" групі="" моделі="" та="" мали="" багато="" червоних="" візерунків.="" патерни="" кроку="" в="" експериментальних="" групах="" розпізнавались="" більше,="" ніж="" групи="" моделей,="" і="" мали="" менше="" червоних="" візерунків.="" серед="" усіх="" експериментальних="" груп="" група="" ah="" показала="" найкраще="" покращення="" в="" моделях="">

На завершення, дані як на рисунках 4, так і на малюнках 5 показують, що JJGY може значно регулювати повільність рухів і дисбаланс ходи, викликаний гострим отруєнням алкоголем, і покращувати центральні розлади краще, ніж позитивний препарат Haiwangjinzun.

Рисунок 5. Вплив JJGY на ходу мишей.

Після тесту на рухову координацію миші отримали багато відпочинку. Потім мишей помістили в систему аналізу на подіумі для запису тривалості бігу (5a), швидкості ходьби (5b), циклу кроків (5c), перегляду часу (5d, RF, справа спереду; RH, справа ззаду; LF, ліворуч спереду). ; LH, лівий задній) і шаблони кроку (5e, Aa, RF-RH-LF-LH; Ab, LF-RH-RF-LH; Ca, RF-LF-RH-LH; Cb, LF-RF-LH- RH; Ra, RF-LF-LH-RH; Rb, LF-RF-RH-LH). Велетень мишей повинен мати певний регламент. Порівняно з контрольною групою, ** P < 0.01,="" ***=""><0.001, compared="" with="" model="" group,="" #="" p="" <="" 0.05,="" ##="" p="" <="" 0.01,="" ###=""><>

Беручи до уваги всі експериментальні результати, група високих доз (АГ) Формули А має найкращий ефект щодо захисту печінки та слизової оболонки шлунка, полегшення аномальної збудливості центру та покращення м’язової відсталості.

Обговорення

У цьому дослідженні в основному використовуються експерименти in vivo для розробки та дослідження терапевтичного ефекту нового типу натуральної антиалкогольної формули JJGY. Формула .JJGY використовує теорію медицини та харчової гомології. Оцінка координації рухів гострих алкогольних отруєнь мишей та їхпечінкафункціяоцінка використовується для визначення ефективності приготовленої суміші та порівняння різниці між прийомом до або після вживання алкоголю.

Спочатку, коли в організм людини за короткий час потрапляє велика кількість алкоголю, він спочатку піддається ферментативному метаболізму в печінці. Коли кількість алкоголю в організмі людини перевищує здатність печінки окисного метаболізму, він буде накопичуватися в тканинах мозку. У цьому процесі для захисту від алкоголізму можна використовувати Puerariae radix, Semen Hoveniaпечінкатравма. Про дію трав позитивно свідчить результат дослідження печінки дослідної групи. Активність AST і ALT значно знизилася, тоді як активність ADH, ALDH, GSH-PX і SOD зросла; вміст АСТ, АЛТ і МДА в сироватці значно знизився, а активність СОД підвищилася, що свідчить про менший некроз гепатоцитів і більш ефективний алкогольний метаболізм у гризунів. Результат фарбування HE зрізів печінки додатково продемонстрував ефективність JJGY упечінказахисту.

Сучасні дослідження виявили, що Puerariae radix може захищати печінку з двох аспектів: з точки зору окислювального стресу, він може покращити антиоксидантну здатністьпечінкатканина, зменшують концентрацію ендотоксину (LPS) і пригнічують експресію цитохрому P4502E1 (CYP2E1), таким чином зменшуючи вироблення вільних радикалів, а такожпечінкатравмаспричинені окисним стресом; з точки зору метаболізму ліпідів, під дією активації AMPK 2 Puerariae radix може значною мірою інгібувати транскрипційну активність білка, що зв’язує регулятор стеролу lc(srebp-lc), і, крім того, інгібувати синтез тригліцеридів (TG)[26]. ]. Інше дослідження механізму боротьби з фіброзом печінки екстракту Semen Hovenia показало, що він може зменшити експресію мРНК TIMP-1 у печінці частоти фіброзу печінки та поступово відновити систему деградації колагену в печінці, тим самим зупиняючи фіброз печінки та граючи роль у захисті печінки [27].

Крім пошкодження печінки, найбільший вплив надмірне вживання алкоголю має на центральну нервову систему. Алкоголь по-різному впливає на нервову систему залежно від кількості спожитого алкоголю та індивідуальної толерантності після того, як алкоголь легко проникає в мозок через гематоенцефалічний бар’єр. Алкоголь належить до інгібіторів центральної нервової системи, і надмірне вживання алкоголю може викликати синдром гострого отруєння. Тест rota-rod та метод аналізу ходи Catwalk, які можуть відображати захворювання або пошкодження центральної нервової системи, а також вплив препаратів на рухову координаційну функцію, показують позитивні результати у гризунів, які отримували JGY у вигляді порядок кроків, хода, тривалість, довжина кроку кожної лапи, тиск лапи та інші параметри. Поліпшення пов’язане з тим, що інгредієнт какао-чаю екстра та сперма Zizipi Spinosae можуть зупинити аномальну центральну збудливість, тоді як L-карнозин відповідає за послаблення м’язової відсталості. L-карнозин також має захисну дію на алкоголіківпечінкатравма[28]. Це перше застосування чаю з какао замість звичайного чаю для досягнення заміни кофеїну, що може ефективно зменшити побічні реакції, спричинені кофеїном [29]. Кілька досліджень седативної та снодійної дії Semen Zizipi Spinosae виявили, що його седативний ефект пов’язаний із регуляцією пов’язаних нейромедіаторів, таких як зниження рівня ГЛЮ, підвищення 5-ht, рівня ГАМК та регулювання експресії ГЛЮ рецептора тощо, що свідчить про те, що Semen Zizipi Spinosae може реагувати на кілька рецепторів, що відображає характеристики багатоцільового та синергічного ефекту традиційної китайської медицини [30]. JJGY також першим застосував карнозин для покращення нестабільності ходи після вживання алкоголю. оскільки нові дані показують, що карнозин діє як цитоплазматичний Ca-H обмінник і утворює стабільні кон’югати з активними альдегідами, спричиненими фізичними навантаженнями [31]. Разом вони можуть зменшити надмірне збудження кори головного мозку, спричинене алкоголем, перешкоду розуму та гальмування в вазомоторному центрі, що може додатково запобігти виникненню ригідності м’язів, судом тощо.

Крім того, зменшення всмоктування алкоголю в шлунково-кишковому тракті досягається додаванням сухого молока та конжакового борошна. Оскільки пероральний прийом алкоголю може безпосередньо пошкодити ліпопротеїновий шар епітелію слизової оболонки шлунка, таким чином пошкоджуючи бар’єр слизової оболонки шлунка. У той же час іони водню в шлунковому соку можуть проникати в епітелій слизової оболонки, викликаючи різні захворювання шлунка, такі як гіперемія слизової оболонки та виразка [32]. Подальше додавання Chrysanthemum morifolium, Hqgthorn [331. Кореневище імперативне [34]. Poria cocos [35] сприяє діурезу та прискорює виведення алкоголю, що може полегшити ефект проти сп’яніння, описаний вище, а також зменшити травму, спричинену алкоголем.

Висновок

У країні та за кордоном існує багато засобів проти сп’яніння. Цей продукт може захистити мишей від гострої алкогольної інтоксикації за допомогою кількох механізмів, захищаючи печінку, зменшуючи аномальну збудливість центру та одночасно покращуючи затримку м’язів. Використання теорії гомології медицини та їжі відкриває новий шлях до розробки гомологічної їжі та китайської фітотерапії ліків проти алкоголізму.

Список літератури

1. Гао В.Л., Х.Х. Ван. Медикаментозна терапія гострих алкогольних інтоксикацій: огляд літератури. Фармацевтичні та клінічні дослідження 2015, 23: 59-61.

2. Gonzalez-Reimers E, et al. Алкоголізм: системний прозапальний стан. Всесвітній журнал гастроентерології: WJG 2014, 20:14660.

3. Liang J, RW. ОЛСЕН. Порушення вживання алкоголю та сучасна фармакологічна терапія: роль рецепторів ГАМК А. Acta Pharmacologica Sinica 2014, 35:981.

4. Harper C. Невропатологія пошкодження мозку, пов’язаного з алкоголем. Алкоголь та алкоголізм 2009, 44: 136-140.

5. Fernandez-Sola' J та ін. Молекулярні та клітинні події при захворюваннях м’язів, спричинених алкоголем. Алкоголізм: клінічні та експериментальні дослідження 2007, 31: 1953-1962.

6. Пріді В.Р. Важливість захворювань м’язів, спричинених алкоголем. Журнал досліджень м’язів і рухливості клітин 2003, 24: 55-63.

7. Саймон Л та ін. Хронічне надмірне вживання алкоголю змінює експресію міогенних генів і знижує in vitro потенціал міогенної диференціації міобластів із Південноамериканського журналу макак-резус. Фізіологія-регуляторна, інтегративна та порівняльна фізіологія 2014.306: 837-844.

8. LS, JS E, MP E. Алкогольна міопатія: патофізіологічні механізми та клінічні наслідки. Дослідження алкоголю: поточні огляди 2017. 38:207.

9. LB. Вплив вживання алкоголю на шлунково-кишковий тракт. Американський журнал гастроентерології 2001, 95.

10. O'Shea RS, S Dasarathy, AJ McCullough. Алкогольна хвороба печінки. Гепатологія 2010.51: 307-328.

11. Ао Х, З Шу. Прогрес у дослідженнях засобів проти сп'яніння. Китайський журнал мікроекології 2012.24;1146-1149.

12. Кім М.С., М. Онг, Х. Ку. Оптимальне лікування алкогольної хвороби печінки: звичайні ліки, природна терапія або комбінована терапія. Всесвітній журнал гастроентерології 2016.22: 8.

13. Wen DC, et al. Вплив АЧС (з’єднання традиційної китайської медицини) на поведінкову сенсибілізацію, спричинену етанолом, і обумовлену перевагу місця у мишей. Доказова комплементарна та альтернативна медицина 2014, 2014.

14. Вей X. Дослідження експериментів на тваринах щодо витверезюючого ефекту звичайного матеріалу для регулювання метаболізму етилового спирту та його продуктів, у Хунаньському сільськогосподарському університеті 2006 р., Хунаньський сільськогосподарський університет: Чанша.

15. Hongwei L, et al. Вплив комплексної рецептурної антиалкогольної дракона на гостру інтоксикацію етанолом. Сучасний журнал інтегрованої традиційної китайської мови

і Westem Medicine 2007: 3310-3311 плюс 3422.

16. Нагасава Т та ін. In vitro та in vivo інгібування окислення м’язових ліпідів і білків відсотком карнозину J Molecular and Cellular Biochemistry 2001, 225:1-2.

17. Jing W та ін. Екстракція пуераріну та ідентифікація розчину вина для захисту функції печінки у мишей. Журнал регіональної анатомії та оперативної хірургії 2015.24: 358-361.

18 Gao XO та ін. Ефект витверезіння Radix Puerariae і Flos Pueraria для лікування гострих алкогольних отруєнь мишей. Journal of Food Science and Biotechnology 2012, 31:621-627.

19. Du JA та ін. Екстракт сперми Hoveniae захищає від гострого ураження печінки, викликаного алкоголем, у мишей. Pharmaceutical Biology 2010, 48:953-958.

20. Гао Х та ін. Клітинний антиоксидант, захоплення метилгліоксалю та протизапальна активність какао-чаю (Camellia ptilophylla Chang). Харчування та харчування 2017, 8: 2836-2846.

21. Чжай Х та ін. Седативна та гіпнотична дія та вплив на ЕЕГ у щурів безсоння сирої та обробленої сперми Ziziphi spinosad. Фармакологія та клініка китайської Materia Medica 2015, 31: 94 97.

22. Chen LY та ін. Захисні ефекти різних екстрактів кореневища Imperatae у щурів з адріаміциновим нефрозом та вплив на експресію TGF-бета та NF-kappaB p65. Zhong Yao cai=Zhongyaocai=Journal of Chinese medicinal materials 2015,38 :2342-2347.

23. Yimam M та ін. Стандартизована композиція з екстрактів Myristica Fragrans, Astragalus Membranaceus і Poria Cocos захищає печінку від гострого впливу етанолом. Журнал лікувального харчування 2016,19:780.

24. Li Y та ін. Вплив гранул відвару Puerariae та екстрактів Pueraria Lobata на гостру алкогольну травму печінки у мишей. Фармацевтичний журнал Китайської народно-визвольної армії 2018 р., 34: 127-130.

25. Shuai TG M Wang, G Zhong. Захисний ефект борошна Konjac на гостру травму головного мозку, спричинену алкоголем, у мишей. Food Science 2018.39:207-213.

26. Qing GX. Вплив кореня пуерарії та квіток пуерарії на захист від алкоголю та печінки та його механізм, в університеті Цзяннань, 2013 р., Університет Цзяннань.

27. Лю Х, Х Чжан, Ф Ван. Вплив екстракту насіння FHD на експресію timp-1 і map-13 у тканині печінки експериментальних щурів. Китайський журнал традиційної китайської медицини 2006.31:1097-1100.

28. Лю В.Х. TC Liu.MC Yin, Сприятливий вплив гістидину та карнозину на індуковане етанолом хронічне ураження печінки. Харчова та хімічна токсикологія 2008, 46: 1503-1509.

29. Xu J. Порівняння чотирьох фітохімічних компонентів групи чаю та дослідження впливу теакрину на центральну нервову систему, у Шеньянському фармацевтичному університеті, 2006 р., Шеньянський фармацевтичний університет.

30. Бо GH. C Чжан. H Wang, прогрес дослідження центрального фармакологічного експерименту відвару suanzaoren. Традиційна китайська медицина Хенань 2019, 39:307-311.

31. Метьюз Дж. Дж. та ін. Фізіологічна роль карнозину та -аланіну у вправі скелетних м’язів людини, відсоток J Медицина та наука у спорті та вправах 2019.

32. Тарнавський А та ін. Алкогольне ураження нормальної слизової оболонки шлунка людини: ендоскопічна, гістологічна та функціональна оцінка. Клінічна та дослідницька медицина. Medecine clinique et experimentale 1987, 10:259-63.

33. Рігельський Дж.М., Б.В. Глід запашний: фармакологія та терапевтичне застосування. American Journal of Health-System Pharmacy 2002, 59:417-422.

34. Шунь Л. Л., В. Дж. Ши, Ф. К. Ван. Огляд хімічних компонентів, медичної функції Rhizoma Imperatae та їх застосування в розробці продуктів охорони здоров'я. Журнал Аньхойського науково-технічного університету 2011, 25:61-64.

35. RiosJL. Хімічні складові та фармакологічні властивості Poria cocos. Planta Medica 2011, 77: 681-691.