Передні ядра таламуса: критичний субстрат для непросторової парно-асоційованої пам'яті у щурів. Частина 2

2|МАТЕРІАЛИ І МЕТОДИ

2.1|Тварини та умови утримання

Самців щурів Long-Evans (віком 12 місяців; середня вага 630 г) поміщали групами по три або чотири людини в клітини Makrolon (48 28 22 см) у зворотному циклі 12- годин світло–темрява (світло вмикається о 20:00). ).

Тестування поведінки проводилося в темну фазу світлового циклу, п’ять сеансів на тиждень; спостереження підтвердили, що щури були відносно більш активними під час темної фази. Щурів підтримували на рівні 85% від маси тіла вільного годування з водою ad libitum; їжа була ad libitum до та після операції для післяопераційного відновлення.

Хірургія - це процес лікування захворювань і поліпшення фізичного здоров'я. Процес відновлення після операції вимагає особливої ​​уваги. Окрім фізичного відновлення, гарне самопочуття також вимагає зосередження на відновленні пам’яті. Існує тісний зв'язок між післяопераційним відновленням і пам'яттю.

Під час операції такі фактори, як несприятлива реакція організму та вплив анестетиків, часто впливають на функцію пам’яті мозку. Після того, як організм відновиться, приділіть увагу дотриманню правильного харчування, помірним фізичним навантаженням і достатньому сну. У позалікарняний період відновлення необхідно продовжувати уникати надмірних навантажень і підтримувати комфортний стан тіла.

Окрім життєвих звичок, розумні психологічні налаштування також допомагають відновити здоров’я та пам’ять. Розслабтеся, зберігайте спокійний розум і допоможіть собі налаштуватися на відновлення пам’яті. У той же час вам слід активно брати участь у розважальних заходах і спілкуватися з родичами та друзями, щоб підтримувати активність свого мозку та покращувати когнітивні здібності та пам’ять. Цю активність можна поступово збільшувати, і її можна виконувати в основному раз на тиждень.

Коротше кажучи, процес відновлення після операції вимагає комплексної уваги. Дотримання хороших життєвих звичок і психологічна адаптація відіграють дуже важливу роль у сприянні фізичному відновленню та відновленню пам’яті. Давайте сприймемо це позитивно, з повною впевненістю та надією. Нам потрібно покращити пам’ять, і Cistanche deserticola може значно покращити пам’ять, оскільки Cistanche deserticola також може регулювати баланс нейромедіаторів, наприклад підвищувати рівень ацетилхоліну та факторів росту. Ці речовини дуже важливі для пам'яті та навчання. Крім того, м’ясо також може покращити кровообіг і сприяти доставці кисню, що може гарантувати, що мозок отримує достатню кількість поживних речовин і енергії, тим самим покращуючи життєздатність і витривалість мозку.

Клацніть «Знай, як покращити роботу мозку».

Усі процедури відповідали затвердженим інструкціям Комітету з етики тварин Кентерберійського університету. Чотири групи щурів були створені шляхом випадкового розподілу після попереднього ознайомлення в радіальному рукавному лабіринті (RAM) і злітно-посадковій смузі. Чотири групи були двосторонніми ураженнями ATN з або без сліду між запахом і предметними подразниками під час навчання в парному асоційованому завданні та відповідних двох групах фіктивних уражень.

Остаточними розмірами вибірки були (1) фіктивне без слідів=7 (тобто фальшива група уражень без інтервалу між запахом і об’єктними подразниками, які використовуються в завданні парного асоціювання); (2) Sham-Trace=7 (група Shamlesion отримала 10-s trace між презентацією запаху та подразниками об’єкта); (3) ATN-No Trace=8; і (4) ATN-Trace=9. Додаткове ураження АТН щура було виключено через невідповідність критеріям ураження (див. нижче).

2.2|Хірургія

Щурів анестезували ізофлураном (індукція 4%; підтримка 2,5%) і поміщали в стереотаксичний апарат з атравматичними вушними дужками (Kopf, Tujunga, CA). Стрижку різців було встановлено на 7,5 мм нижче міжвушної лінії, щоб мінімізувати пошкодження своду.

У кожній півкулі дві інфузії були спрямовані на передньовентральне ядро ​​(AV; верхнє та нижнє), а одну інфузію було спрямовано на передньо-медіальне ядро ​​(AM). Кожна операція використовувала одну п’ять передньо-задніх (AP) координат відносно відстані брегма-лямбда окремого щура (усі значення в мм). Для AV уражень координати AP були: 2,20 для B–L 6,9–7,2; 2,25 для B–L від 7,3 до 7,6; 2,30 для B–L Більше або дорівнює 7,7. AV-інфузії проводили на 5,68 і 5,73 нижче твердої мозкової оболонки та на 1,52 латеральніше від середньої лінії.

Інфузію АМ проводили на {{0}}.1 мм спереду від AV-координати, на 5,76 нижче твердої мозкової оболонки та на 1,16 латеральніше; перше ураження АМ було зроблено після завершення всіх AV-інфузій і почалося контралатерально від останнього місця АВ-ураження. 0.15 М N-метил-d-аспартат (NMDA; Sigma, CastleHill, NSW) у 0.1 М фосфатному буфері (pH 7,20) вводили в кожне місце зі швидкістю 0,04 мкл на хвилину через 2.5-шприц ulHamilton (Reno, NV, USA) з використанням мікроінфузійного насоса (Stoelting, Wood Dale, IL).

AV-сайт першої півкулі отримав {{0}}.12 і 0.10 мкл для дорсального та вентрального сайтів відповідно; 0,06 мкл використовували для кожного місця AM. Голка шприца залишалася на місці протягом 3 хвилин на бік після інфузії.
При хірургічних втручаннях з удаваними ураженнями застосовувалася та сама процедура, але голку опускали на 1 мм вище верхніх AV та AM ділянок ураження без інфузії.

2.3|Поведінкові завдання

RAM із восьми рук підтвердив порушення просторової пам’яті у щурів із ураженням ATN після операції. Пристрій злітно-посадкової смуги використовувався для навчання щурів усім непросторовим завданням, тобто розрізненню простих запахів і простих об’єктів, а також парним асоційованим завданням запах–об’єкт і запах–слід–об’єкт.

Перед хірургічним втручанням щурів з обмеженим харчуванням привчали до ОЗУ з восьми рукоятей, описаного нижче, для отримання 0.1 г шматочків шоколаду (Foodfirst LTD Окленд, Нова Зеландія) і адаптації до відкривання та закривання дверцят ручок. На злітно-посадковій смузі з червоного плексигласу (рис. 1) щури також мали форму носа, щоб тикати круглий білий пластиковий ковпачок 2-} см, який знаходився на 10 см над рівнем підлоги та знаходився в центрі тонкої губки на прозорій вставці з плексигласу, яка була прикріплена до торцеву стіну.

Вони також мали форму, щоб штовхати (за допомогою носа чи лапи) предмет, закріплений на задній частині його основи, до верхньої частини харчової ямки, яка була втоплена в центрі дерев’яного бруска розміром 5 8,5 3 см. Їжа містила шматочки шоколаду (і тримала недоступну їжу під заглибленням). Предмет, який використовувався для попереднього навчання, більше не використовувався. Після хірургічного втручання щурів, які відновлювалися, знову знайомили як з RAM, так і з злітно-посадковою смугою.

2.4|Просторова робоча пам'ять в оперативній пам'яті

Після операції просторову робочу пам'ять перевіряли за допомогою ОЗУ, розташованого в центрі кімнати без вікон (3 3 м). Лабіринт мав пофарбовану в сірий колір дерев’яну центральну втулку шириною 35 см з вісьмома алюмінієвими рукавами (65 см завдовжки і 8,6 см завширшки, з межами висотою 4,5 см), піднятими на 67,5 см над підлогою кімнати. Прозорі стінки з плексигласу (19 см завдовжки та 25 см заввишки) простягаються вздовж однієї сторони кожного плеча від втулки, щоб запобігти стрибку щурів між руками.

Чорну дерев’яну харчову ямку (5 8,5 3 см) із недоступною їжею під нею було розміщено на кінці кожного рукава. Під час тестування 2 0.1 г шматочки шоколаду були присутні в кожній харчовій лунці на початку кожного суд. Гільйотинні дверцята з прозорого плексигласу, які можна було підняти з-під втулки за допомогою системи шківів, контролювали доступ до рук втулки.

Десять послідовних днів формального навчання в RAM були використані для перевірки просторової оперативної пам'яті. Щура помістили в центральну втулку, а через 10 секунд усі вісім рук розкрили, і щуру дозволили зробити вибір, визначений як обидві задні лапи над порогом руки. Як тільки щур проникає в руку, всі двері зачиняються, і вона залишається в рукаві протягом 15 секунд, незалежно від того, чи зробила вона правильний вибір.

Потім щура пустили назад у центральний вузол і тримали там 10 секунд, перш ніж усі двері знову відчинили, щоб дозволити вибрати іншу руку. Випробування завершилося, коли ратхад відвідав усі вісім рук, було зроблено 20 виборів рук або минуло 10 хвилин.

2,5|Непросторові завдання: просте розрізнення та навчання в парах

І для простого розрізнення, і для парних асоційованих завдань використовувалася одна й та сама червона злітно-посадкова смуга з плексигласу (93 26 26 см), розміщена на столі висотою 75- см (рис. 1). Злітно-посадкова смуга могла бути розділена трьома вертикально знімними дверима (червоний плексиглас, 26 26 см), які були обрані на основі конкретного поведінкового завдання. Щодо ознайомлення, тонка губка 6,5 6 8 мм із ковпачком у центрі тримала шоколадну нагороду (рис. 1).

Губка була прикріплена до знімних дверцят на злітно-посадковій смузі (для завдань, пов’язаних з парами) або на торцевій стінці злітно-посадкової смуги (для простого завдання розрізнення). Для кожного запаху використовували окрему дверну губку, яку наповнювали поруч із ємністю 5 мл соняшникової олії, змішаної з 20 мкл субстанції ефірних олій Нової Зеландії.

Запахи були лимоном і гвоздикою для парних асоційованих завдань, і корицею і лаймом для простих розрізнювальних завдань, або навпаки для врівноважених груп. Легкі та візуально чіткі об’єкти (рис. 1) були прикріплені за допомогою шарніра в задній частині основи до верхньої частини лунки для їжі, щоб щур міг легко штовхнути об’єкт назад (носом або лапою), щоб шукати в лунці винагороду за їжу.

Дерев’яна рама (1,8 м заввишки від підлоги завширшки 1,3 м), завішана чорними шторами, оточувала всі сторони тестової зони, щоб зменшити просторові сигнали під час тестування.

У простих розрізненнях (тільки за запахом; лише об’єкт) і завданнях на парне асоціювання використовувалась процедура «іти/не йти».

Перше випробування для кожного сеансу починалося зі стримування щура в стартовій зоні на 120 секунд для повторної акліматизації до лабіринту; наступні випробування використовували 20 с у цій початковій зоні. Allrats отримували 12 масових випробувань за щоденну сесію, із шістьма випробуваннями (з винагородою) і шістьма випробуваннями без винагороди (без винагороди) у псевдорандомізованому порядку. Під час одного сеансу поспіль проводилося не більше трьох випробувань «іти» або «трьох «ні» випробувань.

Жодна з чотирьох різних пар стимулів запах–об’єкт не повторювалася під час послідовних випробувань. Правильні завдання в простих завданнях на розрізнення та правильні пари стимулів у завданнях на асоційовані пари були врівноважені для щурів.

Для простого розпізнавання запаху відповідь була визначена як тиць носом у ковпачок у центрі ароматизованої губки; лише нюхання губки вважалося забороненою реакцією. Їжа завжди була присутня в ковпачку в центрі губки для завдань, пов’язаних із запахом, парним об’єктом; Аспект йти/не йти тут стосується того, чи було штовхнуто об’єкт, щоб виявити, чи є винагорода за їжу під ним, у кінці злітно-посадкової смуги.

Для об’єктів реакція визначалася як будь-який поштовх носом або лапою, який нахиляв об’єкт назад. Затримка з моменту підняття останніх дверей і взаємодії щура із запахом (тицяння носом у шапку; для простого розрізнення запаху) або з об’єктом (відштовхування назад на петлі, для простого розрізнення об’єктів і завдань, пов’язаних з парами) становила виміряно за допомогою тихого секундоміра (Дік Сміт, Нова Зеландія).

Спостерігач сидів за завісами та поруч із злітно-посадковою смугою, щоб керувати дверима та записувати поведінку. Випробування вважалося «правильним», якщо щур відповідав менш ніж за 8 с під час випробувань або не відповідав раніше 8 с у випробуваннях без дій.

2.6|Прості дискримінації

Половина щурів навчилася простому розрізненню запахів, а потім простому розрізненню об’єктів і навпаки для іншої половини. Була зареєстрована затримка між дверима X (рис. 1а) і взаємодією із запахом або об’єктом у кінці злітно-посадкової смуги. Щурів навчали простому розрізненню запаху та простому об’єкту, доки вони не досягли критерію (80% правильних протягом 2 днів поспіль).

Для простого завдання розрізнення запахів у кожному досліді був представлений один запах. Рат мав розрізнити, який із двох запахів поєднується з харчовою винагородою, представленою в губці в кінці відсіку B (рис. 1а).

У простому завданні розрізнення об’єктів один об’єкт був представлений під час кожного випробування в кінці компартменту B (не показано на малюнку 1). Терат повинен був дізнатися, який із двох об’єктів поєднується з харчовою винагородою під об’єктом.

2.7|Завдання з парним асоціюванням (відстеження та відсутність відстеження). У цих завданнях використовувався новий макет вертикально знімних дверей (Малюнок 1). Щури дізналися, яка з двох пар запах–об’єкт буде винагороджена (наприклад, Запах 1 + Об’єкт A і Запах 2 + Об’єкт B), а які пари не будуть винагороджені (тобто Запах 1 + Об’єкт B і Запах 2 + Об’єкт A).

Незалежно від парування, щури завжди отримували винагороду за запах, коли їх пропускали до другого відсіку злітно-посадкової смуги. Це був відсік C для умови «без слідів», у якому відсік A не використовувався, а відсік B був початковим відсіком. Запах був у кінці відсіку B для стану «слідів», для якого відсік A використовувався як початковий ящик.

Щурів у стані слідів піддавали 10--секундній затримці між презентацією запаху та подразниками об’єкта, утримуючи їх у відділенні C, тоді як щурів у стані відсутності слідів піддавали впливу об’єкта одразу після їхньої взаємодії із запахом (після з’їдаючи нагороду). Як в умовах відстеження, так і без відстеження ми зафіксували затримку проходження відсіку D від моменту підняття DoorZ до того, як щур взаємодіяв з об’єктом або утримувався від взаємодії з ним протягом 8 секунд.

Дві групи щурів (Sham-lesion та ATN-lesion) навчалися виконанню парних асоційованих завдань запах–об’єкт (групи «Без слідів»), а дві відповідні групи навчалися виконанню парних асоційованих завдань запах–слід–об’єкт (групи слідів), доки вони не досягнутий критерій (80% правильних випробувань протягом 3 днів) або максимум 50 днів.

2.8|Тест на збереження після придбання

Збереження завдання на пару-асоційований для будь-якого щура проводилося через 5 днів після досягнення критерію або після 50 днів навчання. У цьому сеансі використовувалися 12 масових винагороджених/невинагороджених випробувань протягом одного дня таким же чином, як раніше для цього щура.

2.9|гістологія

2.9.1|Перфузія та забір тканин

За 3 дні до тесту на утримання поодиноких щурів знайомили з порожньою чистою кліткою протягом 90 хвилин у темній тихій кімнаті. Одразу після останнього випробування в тесті на утримання щура помістили в клітку в звичну темну тиху кімнату за 90 хвилин до перфузії.

Щурів глибоко анестезували пентобарбіталом натрію (125 мг/кг) і транскардіально перфузували фізіологічним розчином, а потім параформальдегідом [4% PFA в 0.1 М фосфатному буфері (PB)] для фіксації мозку. Мозок постфіксували в 4% PFA, а потім протягом щонайменше 48 годин у довготривалому розчині (20% гліцерину в 0,1 М PB). Корональні 40-мкм зрізи збирали за допомогою мікротома для заморожування (Thermo Fisher, Великобританія) і зберігали в розчині кріопротектора (30% гліцерину, 30% етиленгліколю в 0,1 М PB) при 20 C до обробки для імуногістохімічного дослідження.

Корональні зрізи збирали у дві окремі серії. Перша серія охоплювала послідовні зрізи в п’яти кріопробірках для імуногістохімії (тобто кожен п’ятий). Ця серія включала передній блок відділів від префронтальної кори до області перегородки (приблизно {{0}}.7–0,6 мм від Брегми) і задній блок від медіодорзального таламуса (приблизно 3,5 мм від Брегми) до каудального відділу ретроспленіальна кора.

Друга серія фіксувала послідовні секції для перевірки ураження. Ці зрізи збирали в чотири кріопробірки від безпосередньо передньої частини ATN до задньої медіодорзальної частини таламуса (приблизно 0.6–3,5 мм від Bregma).

2.9.2|Фарбування Neu-N і перевірка ураження ATN

Вільно плаваючі зрізи по всій області ATN промивали (3 1 0 хв) у 0.1 М фосфатно-буферному сольовому розчині з Triton-X (0,2%; PBSTx) перед інкубацією в буфері для блокування ендогенної пероксидази протягом 30 хв [1% перекис водню (H2O2), 50% метанол (CH3OH) у 2% PBSTx].

Зрізи інкубували протягом ночі при 4°C в первинних антитілах анти-NeuN (1:5000; моноклональне MouseCat# MAB377; Millipore, Каліфорнія, США) у PBSTx з 1% нормальної козячої сироватки (NGS; Life Technologies, NZ).

Надлишок буфера антитіл видаляли за допомогою PBSTx з подальшою інкубацією в біотинільованому козячому антимишачому вторинному антитілі (1:1000 Cat# BP-9200-50: VectorLaboratories, Каліфорнія, США) протягом ночі при 4°C у PBSTx і 1% NGS. Зрізи поміщали в ExtrAvidin (пероксидазний кон'югований; 1:1000; Sigma, NSW Australia), PBSTx і 1% NGS на 2 години при кімнатній температурі.

Щоб видалити надлишок ExtrAvidin і Triton X{{0}}, зрізи промивали PBS, PB, а потім трис-буфером (pH 7,4 у дистильованій H20), щоб підготувати зрізи для візуалізації за допомогою свіжоприготованого діамінобензидину ( DAB 0,05%; Sigma, у 0,01% H2O2 у трис-буфері).

Реакцію DAB (приблизно на 5 хвилин) зупиняли за допомогою трис-буфера (10-хвилинна промивка), і зрізи поміщали в PB при 4°C на ніч перед тим, як помістити на желатиновані предметні скла, і давали висохнути. Скела були зневоднені за допомогою спирту (70%–100%) перед очищенням у ксилолі та змонтованими за допомогою DPX (06522; Sigma-Aldrich) і накривного скла.

Для визначення ступеня ураження використовували кількість Neu-N-позитивних клітин в ATN. Для цього використовувалися розділи як лівої, так і правої півкуль для кожного розділу в чотири 40- мкм по всій ATN, а площа кількісно визначена за допомогою ImageJ (NIH, США). Фарбування NeuN-позитивних клітин фотографували на 5 об’єктивах на вертикальному мікроскопі LeicaDM6 B і камері DFC7000T (Leica Microsystems, Німеччина).

Автоматизований підрахунок клітин був отриманий за допомогою ImageJ (програмне забезпечення для аналізу зображень, Національний інститут охорони здоров’я, NIH, США). Область, що оточує нейрони в області ATN, була вибрана вручну, а зображення було перетворено на {{0}}бітову шкалу сірого, фон було віднято (прокат=40), перетворено на маску та застосовано функцію вододілу, і всі нейронні клітини вище порогу (поріг «Максентропії», круговість 0.5–1.0) були підраховані.

Поріг виявлення був однаковим для всіх зрізів. Автоматично пофарбовані NeuN ядра клітин підраховували в дев’яти фіктивних щурах (п’ять у групі Sham-Trace і чотири в групі Sham-No Trace), щоб виразити кількість клітин в ATN.

Автоматизовані підрахунки забарвлених NeuN ядер звільнених клітин у всіх щурів із ураженням ATN порівнювали відносно середньої кількості клітин NeuN, що спостерігали у фіктивних щурів. Прийнятні ураження були визначені як досягнення критерію 50% втрати клітин в ATN, з мінімумом 25% на півкулю. Це узгоджується з критеріями ураження ATN у попередніх дослідженнях (Mitchell & Dalrymple-Alford, 2005, 2006; Perryet al., 2018).

2.9.3|Імуногістохімія Zif268

Вільно плаваючі зрізи обробляли так само, як для NeuN, але інкубували в кролячому поліклональному первинному антитілі Zif268 (Egr-1; 1:1000 Cat# sc-110; Santa CruzBiotechnology, США) протягом 72 годин при 4 C у PBSTx з 1% NGS з подальшою інкубацією в біотинільованому козячому вторинному антикролячому антитілі (1:1000: Vector LaboratoriesBA-1000) протягом ночі в PBSTx та 1% NGS.

Після візуалізації DAB (18 хв) Zif268-позитивне фарбування клітин у кожній цікавій області було сфотографовано за допомогою об’єктива 10 за допомогою світлового мікроскопа (Leica, Німеччина). Автоматичний підрахунок клітин був отриманий за допомогою ImageJ ( NIH, США) так само, як і NeuNpositive клітини, за винятком того, що круговість була встановлена ​​на 0.65–1.0.

Для підрахунку Zif268-позитивних клітин для всіх регіонів використовувався той самий пороговий алгоритм, із кількісним визначенням від двох до шести ділянок на область інтересу для кожного щура. Було використано середню кількість Zif268-позитивних клітин на мм2 у зрізах (з обох півкуль) у межах досліджуваної області.

2.10|Аналіз даних

ANOVA з використанням Statistica (v13; Dell Inc.) було проведено для перевірки середніх відмінностей між чотирма групами щурів (Sham-No Trace, Sham-Trace, ATN-No Trace і ATNTrace). Коефіцієнти повторних вимірювань були додані для днів (оперативна пам’ять і проста дискримінація), блоків випробувань (парно-асоційовані завдання) та підрахунків Zif268 у відповідних регіонах або субрегіонах, що представляють інтерес.

Дисперсійний аналіз ANOVA як для задач RAM, так і для завдань простого розрізнення порівнював чотири групи, щоб підтвердити, що дві групи уражень Sham і дві групи уражень ATN узгоджуються одна з одною, але зауважте, що в завданнях RAM або простих розрізнень не було компонента сліду. Як для простої дискримінації, так і для парно-асоційованих завдань на злітно-посадковій смузі використовувалося взаємне перетворення даних затримки в окремих випробуваннях, щоб забезпечити однорідність дисперсії.

У будь-який день тестування трансформовані затримки генерували середню затримку для кожного з шести випробувань без винагороди та шести випробувань із винагородою. Для простих завдань розрізнення ми проаналізували середню оцінку різниці затримок (середнє значення випробувань із винагородою мінус середнє значення випробувань без винагороди), але не окремо випробування з винагородою та без винагороди через збій зберігання даних.

Усі три вимірювання затримки були доступні для завдань пам’яті з парним зв’язком (випробування без винагороди, випробування з винагородою та різниця затримок). Щоб врахувати численні порівняння та збалансувати помилки типу I та типу II, ми використали рівень значущості p < 0.02 для аналізу поведінки, оскільки було три пов’язані вимірювання в завданні з парним асоціюванням (випробування без винагороди, дослідження з винагородою і середня різниця затримок).

Було проведено шість первинних аналізів для регіонів, що представляють інтерес для експресії Zif268, тому значущість у цих аналізах була встановлена ​​на рівні p < 0.01. Тести Posthoc Newman–Keuls (NK) оцінювали попарні групові відмінності. Простий аналіз основних ефектів використовувався, коли існували значні взаємодії за участю факторів повторного вимірювання.

3|РЕЗУЛЬТАТИ

3.1|Перевірка ураження

Усі, крім одного, з 18 щурів з ураженням ATN відповідали апріорному критерію 50% двостороннього ураження ATN і мінімум 25% на півкулю. Середнє двостороннє пошкодження становило 76% в обох групах уражень ATN (діапазон: ATN-No Trace, 61%–93%; ATN-Trace, 63%–93%; рис. 2). Виключений щур мав задовільні ураження лише однієї півкулі (48% загалом, 75% лівої та 20% правої).

На малюнку 2d показано, що кількість NeuN для нейронів ATN у щурів із ураженням ATN (M=3388, SD=2024) була значно нижчою від значень, виявлених у щурів із фіктивним ураженням (M=15, 339, SD=1065; цей підрахунок був подібний до того, про який повідомили Фрост та ін., 2020). У восьми з 17 щурів із ураженням (чотири в групі Trace і чотири в групі No-Trace) не було пошкоджено ані медіодорзальний таламус (MD), ані ядра возз’єднання/ромбоподібні (Re/Rh), і було відносно невелике пошкодження ці структури у дев'яти щурів з ураженнями.

Коли виникло пошкодження MD, це було в передніх аспектах, які прилягають до ATN. Таким чином, пошкодження MD було оцінено приблизно від {{0}}.72 до +2.10 мм від Bregma, де воно коливалося від 0% до 41% втрати клітин по всьому група (медіана=21%). Коли відбувалося пошкодження Re/Rh, воно також було поруч із областю ATN, тому його оцінювали приблизно на 1,08–2,04 мм від Bregma, де воно коливалося від 0% до 33% (медіана=6%). Зауважте, що ці процентні значення ушкодження не представляють повну область MD і Re/Rh, оскільки задні області обох ядер були інтактними у всіх щурів із ураженням ATN.

For more information:1950477648nn@gmail.com