Сторона 1: Протизапальні та антиоксидантні властивості сортів пшона (Eleusine Coracana (L.) Gaertn.), культивованого в Шрі-Ланці

Для отримання додаткової інформації. контактtina.xiang@wecistanche.com

Поширеність захворювань, опосередкованих запаленням і окислювальним стресом, зростає в усьому світі, створюючи зростаючий попит на нові джерелапротизапальні лікиагенти іантиоксиданти. Це дослідження було зосереджено на визначенні in vitro арахідонат {{0}}ліпоксигенази (A5-LOX), ксантиноксидази (XO), гіалуронідази, інгібіторної активності окисного вибуху та антиоксидантних властивостей Ravi, Rawana і сорти проса Oshadha з використанням етанольного та метанольного екстрактів. Серед усіх екстрактів метанольний екстракт Oshadha продемонстрував найвищу інгібіторну активність A5-LOX （ICsvalue∶ 484,42ug/ml） та XO （ICsvalue∶764,34ug/ml). Усі екстракти продемонстрували менш ніж 50% інгібіторну активність щодо гіалуронідази при концентрації 1 мг/мл. Метанольні екстракти продемонстрували помірний інгібуючий потенціал щодо активних форм кисню (АФК), що утворюються з фагоцитів цільної крові, із значеннями IC0в діапазоні між 26,9 і 27,7 мкг/мл у порівнянні з ібупрофеном (IC.value: 11,18 мкг/мл). Усі екстракти продемонстрували потужне пригнічення АФК, що утворюються з поліморфноядерних нейтрофілів, виділених із крові людини, порівняно з ібупрофеном (значення ICs: 2,47 мкг/мл), а значення ICs метанольних і етанольних екстрактів коливаються від 0,29 до 0,47 мкг/мл і від 1,35 до 1,70 мкг/мл, відповідно. Усі екстракти мали значно високу кількість фенольних сполук, у тому числіфлавоноїдиі здатність поглинати катіон 2,2'-азино-біс(3-етилбензотіазолін-6-сульфонової) кислоти (ABTS), 2,2-дифеніл-1-пікрилгідразил( DPPH) і радикали кисню. Крім того, вони змогли відновити іони металів і хелатувати іони металів, припиняючи реакції утворення радикалів. Це перший звіт про інгібіторні властивості A5-LOX, XO, гіалуронідази та окислювальних вибухів будь-якого екстракту будь-якого сорту проса, що культивується на Шрі-Ланці. Висновки показали потенціал використання цих екстрактів пшона як природних джерел протизапальних препаратів-кандидатів. Крім того, результати показали, що сорти Раві, Равана та Ошадха є хорошими джерелами антиоксидантів. Таким чином, споживання цих сортів проса на регулярній основі може відігравати важливу роль у профілактиці та дієтичному лікуванні захворювань, пов’язаних із окислювальним стресом.

Натисніть тут, щоб дізнатися більше про продукти

1. Введення

Запаленняє захисною реакцієюімуннийсистема для усунення шкідливих подразників, таких як патогени, пошкоджені клітини, алергічні чи хімічні подразнення, а також для початку процесу загоєння. Хоча запалення є нормальною реакцією, якщо його не контролювати, надмірне запалення призводить до багатьох гострих і хронічних захворювань. В даний час поширеність запальних захворювань у всьому світі зростає, що створює зростаючий попит на нові та ефективні протизапальні засоби [1, 2].

Арахідонат 5-ліпоксигеназа (A5-LOX) є ключовим ферментом, який бере участь у біосинтезі потужних медіаторів запальних захворювань і алергічних реакцій. Він каталізує утворення лейкотрієнів з арахідонової кислоти [3]. Лейкотрієни є ендогенними медіаторами в патогенезі ряду запальних захворювань, включаючи астму, алергічний риніт, хронічний бронхіт, ревматоїдний артрит, запальні захворювання кишечника та алергічні реакції [3,4]. Таким чином, інгібування A5-LOX є важливим у профілактиці та лікуванні різних запальних захворювань.

Ксантиноксидаза (XO) каталізує окислення гіпоксантину до ксантину та ксантину до сечової кислоти [5]. Інгібітори XO блокують біосинтез сечової кислоти і, як наслідок, знижують рівень сечової кислоти, а також судинний окислювальний стрес. Під час каталітичної дії XO утворюються активні форми кисню (АФК), і, отже, XO відіграє патогенетичну роль також при інших запальних захворюваннях. Отже, інгібітори XO важливі в лікуванні різних запальних захворювань, що супроводжуються каталітичною дією XO [2,5].

Гіалуронідаза є лізосомальним ферментом, який каталізує гідроліз мукополісахаридів, таких як гіалуронова кислота. При ревматоїдному артриті гіалуронідаза надмірно розщеплює гіалуронову кислоту та зменшує її кількість і молекулярну масу, викликаючи симптоми артриту [6]. Інгібування розпаду гіалуронової кислоти є критично важливим і обов'язковим для контролю патологічних станів, опосередкованих гіалуронідазою [7].

При запальних станах імунні клітини притягуються до вогнища запалення. Під час захисних та імунологічних реакцій НАДФН-оксидази, що знаходяться в імунних клітинах, активуються та генерують АФК у великих кількостях, створюючи окислювальний вибух [1, 8]. Низькі та помірні кількості АФК сприятливі для різних фізіологічних процесів. Однак надмірне виробництво АФК дерегулює клітинні функції, що, у свою чергу, посилює запальний стан [8,9]. Таким чином, інгібування індукованого ROS окислювального вибуху є потенційним засобом для запобігання та лікування захворювань, опосередкованих запаленням.

Під час окисного фосфорилюваннявільні радикалиу тому числі АФК утворюються як побічні продукти [10]. Окрім нормального клітинного метаболізму, існує багато інших факторів, які призводять до утворення вільних радикалів, і якщо швидкість утворення вільних радикалів перевищує швидкість нейтралізації, окислювальний стрес створюється, і це значно сприяє всім запальним захворюванням. Оскільки антиоксиданти здатні запобігати утворенню вільних радикалів і гасити вільні радикали, баланс між антиоксидантами і вільними радикалами є важливим для підтримки фізіологічних функцій належним чином [8,11,12].

Просо пальчасте (Eleusine coracana(L.)Gaertn.) є найважливішим дрібним пшоном у тропіках, і раніше повідомлялося про кілька терапевтичних властивостей пальчастого проса [13-17]. Однак для сортів проса, які зараз культивуються та споживаються на Шрі-Ланці, недостатньо наукових доказів терапевтичних властивостей

і потенційну користь для здоров’я споживачів. Отже, вкрай важливо вивчити протизапальні та антиоксидантні властивості сортів шрі-ланкійського проса та визнати їх потенціал для покращення харчування та стану здоров’я споживачів. Поширеність захворювань, опосередкованих запаленням і окислювальним стресом, зростає в усьому світі, що створює попит на нові джерела протизапальних засобів і антиоксидантів [1, 2]. Зважаючи на це, дане дослідження було зосереджено на оцінці сортів проса пальчастого Шрі-Ланки щодо протизапальних властивостей in vitro з точки зору A5-LOX, XO, гіалуронідази, активності пригнічення окислювальних вибухів і антиоксидантних властивостей за допомогою різних аналізів антиоксидантів .

2. Матеріали та методи

2.1. Відбір та підготовка проб. Сорти проса, рекомендовані для вирощування в Шрі-Ланці Департаментом сільського господарства, а саме Ravi, Rawana та Oshadha, були зібрані з Інституту досліджень і розвитку польових культур (FCRDI), Махайлуппаллама, Шрі-Ланка. Ці сорти вирощували на експериментальних ділянках у низинній сухій зоні, у FCRDI, Mahailuppallama, і насіння було сертифіковано Службою сертифікації насіння Департаменту сільського господарства Шрі-Ланки.

Насіння проса пальчастого лущили (TM 05C, Satake Cor-poration, Японія), а борошно з цільного зерна отримували шляхом помелу (Pulverisette 14, Fritsch, Німеччина) та пропускання через сито 0,5 мм. Борошно з цільного зерна екстрагували етанолом і метанолом окремо. Цільнозернове борошно (100 г) екстрагували розчинником (400 мл) протягом ночі при кімнатній температурі (28±2 градуси) за допомогою магнітної мішалки та центрифугували при 4000 об/хв протягом 20 хв. Супернатант збирали окремо, а залишок повторно екстрагували двічі, використовуючи ті самі умови. Супернатанти об’єднували та випарювали насухо при зниженому тиску при 40 градусах за допомогою роторного випарника (R-114, Büchi Labortechnik AG, Швейцарія). Екстракти без розчинників зберігалися в герметичних скляних контейнерах при -20 градусах до використання для аналізу.

2.2. Ферменти, хімічні речовини та обладнання. Фенольний реагент Folin-Ciocalteu, хлорид алюмінію, 2,4,6-Tri(2-pyridyl)-s-triazine (TPTZ), 2,2'-azobis (2-amidinopropane) дигідрохлорид (AAPH),2,2-дифеніл-1-пікрилгідразил (DPPH), кверцетин,6-гідрокси-2,5,7,8-тетраметилхроман{{19} }карбонова кислота (Trolox), етилендіамінтетраоцтова кислота (EDTA), 2,2'-азино-біс(3-етилбензотіазолін-6-сульфокислота) діамонієва сіль (ABTS), флуоресцеїн,3-( 2-Піридил)-5,6-дифеніл-1,2,4-триазин-п,пдисульфонова кислота мононатрієва сіль

гідрат (ферозин), арахідонат 5-ліпоксигеназа, лінолева кислота, байкалеїн, ксантиноксидаза, ксантин, алопуринол, гіалуронідаза, натрієва сіль гіалуронової кислоти, п-диметиламінобензальдегід, галова кислота, дубильна кислота, диметилсульфоксид та ібупрофен були придбані в Сігма-Олдріч, Міссурі, США. HBS* plus і HBSS були придбані у Thermo Fisher Sci-entific Inc., Массачусетс, США. Зимозан був придбаний у Wako Pure Chemical Industries Ltd., Осака, Японія.

Люмінол (3-амінофталгідразид) було придбано в Alfa Aesar GmbH & Co KG, Карлсруе, Німеччина. Середовище для розділення лімфоцитів було придбано у MP Biomedicals, Inc., Огайо, США. Усі інші хімічні речовини та реагенти, що використовувалися в експериментах, мали клас ACS, HPLC та аналітичний клас. Для визначення здатності поглинання радикалів кисню використовували флуоресцентний рідер для мікропланшетів (SpectraMax-Gemini EM, Molec-ular Devices Inc., США). Для хемілюмінесцентних аналізів використовували люмінометр (Luminoskan RS, Labsystems, Фінляндія). Для всіх інших біотестів використовувався зчитувач мікропланшетів (Spectra-Max Plus384, Molecular Devices Inc, США).

2.3. Визначення загального фенольного вмісту. Загальний вміст фенолів (TPC) визначали за методом Фоліна-Чокальтеу 【18】. Екстракт проса пальчастого （20ul） змішували зі 110 мкл свіжоприготованого в 10 разів розведеного реагенту Фоліна-Чокальтеу та 70 мкл розчину карбонату натрію (10% мас./об.) та інкубували при кімнатній температурі (КТ) протягом 30 хв. Поглинання вимірювали при 765 нм. Для побудови стандартної кривої використовували галлову кислоту (y=0.0532x плюс 0.0339;r=0.9992), а TPC розраховували як мг еквівалентів галової кислоти (GAE) на 100 г борошна на сухому вагова основа.

2.4. Визначення загального вмісту флавоноїдів. Загальний вміст флавоноїдів (ЗФВ) визначали за допомогою колориметричного методу хлориду алюмінію [19]. Екстракт пшона (100 мкл) змішували з розчином хлориду алюмінію (2 відсотки мас./об., 100 мкл), інкубували протягом 10 хв при кімнатній температурі та вимірювали поглинання при 415 нм. Кверцетин використовувався для побудови стандартної кривої（y=0.0349x-0.2091; r²=0.9974）, а TFC розраховували як мг еквівалента кверцетину на 100 г борошна на основі сухої маси.

2.5. Визначення активності поглинання радикалів DPPH. Здатність захоплювати радикали DPPH визначали за методом, описаним Блуа [20]. Екстракт проса пальчастого (50 мкл) змішували з 90 мкл метанолу та 60 мкл розчину DPPH (0,02 % мас./об.) та інкубували при кімнатній температурі в темряві протягом 10 хв. Значення абсорбції зразка (As) і контролю (Ac) вимірювали при 517 нм. Тролокс використовувався як стандарт. Активність поглинання радикалів DPPH як відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (1). Значення ICs розраховували за допомогою графіків доза-відповідь.

2.6. Визначення активності поглинання катіонних радикалів ABTS. Здатність захоплювати катіонні радикали ABTS визначали згідно з методом, описаним Re et al. [21] з деякими змінами. Розчин катіон-радикалу ABTS готували інкубацією 10 мг ABTS у 2,5 мл персульфату калію при 37°C у темряві протягом 16 годин і розведенням у 7 разів 50мМ фосфатним буферним фізіологічним розчином (pH 7,4). Екстракт пшона (12,5 мкл) змішували з фосфатно-сольовим буферним розчином (147,5 мкл) і свіжоприготованим розчином катіон-радикалів ABTS (40 мкл) та інкубували при кімнатній температурі в темряві протягом 10 хв. Значення абсорбції зразка (As) і контролю (Ac) вимірювали при 734 нм. Тролокс використовувався як стандарт. Активність поглинання катіонних радикалів ABTS як відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (2). Значення ICs обчислювали за допомогою графіків доза-відповідь.

2.7. Визначення здатності до поглинання радикалів кисню (ORAC). ORAC оцінювали відповідно до методу, описаного Оу та ін. [22]. з деякими модифікаціями. Розчини флуоресцеїну (4,8 мкМ) і AAPH (40 мг/мл) готували в 75 мМ фосфатному буфері (pH 7,4). Екстракт пшона (10 мкл) змішували з 40 мкл фосфатного буфера та 100 мкл флуоресцеїну та інкубували при 37 градусах протягом 10 хв. Додавали AAPH (50 мкл) і вимірювали розпад флуоресцеїну при довжинах хвиль збудження та випромінювання 494 ​​нм і 535 нм відповідно при 37 градусах протягом 35 хвилин з інтервалами в 1 хвилину за допомогою флуоресцентного пристрою для зчитування мікропланшетів. Tro-lox використовувався як стандарт. Було зареєстровано значення площі під кривою (AUC) зразка (AUC), контролю (AUC) і тролокса (AUC-). Значення ORAC було розраховано за допомогою рівняння (3), де конц. означає концентрацію. Результати були виражені в мг еквівалентів Trolox на 100 г борошна на основі сухої маси.

2.8. Визначення хелатної активності іонів заліза (FIC).. Здатність хелатувати іони заліза визначали за методом, описаним Картером [23]. Екстракт пшона (100 мкл) змішували з 1 мМ розчином сульфату заліза (20 мкл) і 40 мкл дистильованої води. Потім додавали 1 мМ розчин ферозину (40 мкл) та інкубували протягом 10 хвилин при кімнатній температурі. Значення абсорбції зразка (As) і контролю (Ac) реєстрували при 562 нм. Як стандарт використовували ЕДТА. Активність FIC як відсоток хелатування розраховували за допомогою рівняння (4).

2.9. Визначення антиоксидантної сили заліза (FRAP). FRAP визначали за методом, описаним Benzine і Szeto [24] з деякими модифікаціями. Реагент FRAP готували шляхом змішування 300мМ ацетатного буфера (pH 3,6), 20мМ хлориду заліза та 10мМ TPTZ у співвідношенні 10:1:1 та інкубації при 37°C протягом 10 хвилин. Екстракт проса пальчастого (20 мкл) змішували з 30 мкл ацетатного буфера та 150 мкл свіжоприготованого реагенту FRAP, інкубували при кімнатній температурі протягом 8 хв, і абсорбцію реєстрували при 6 00 нм. Trolox використовувався для побудови стандартної кривої（y=0.17x плюс 0.15;产=1.00）, а FRAP розрахував як мг еквівалентів Trolox на 100 г борошна на основі сухої маси.

2.10. Визначення інгібуючої активності A5-LOX. Інгібіторну активність {{0}}LOX оцінювали відповідно до методу, описаного Tappel [25] з деякими модифікаціями. Екстракт пшона (10мкл) змішували з 115мкл 100мМ натрій-фосфатного буфера (рН 8,0) і 50мкл розчину A5-LOX (5000U/мл) та інкубували при кімнатній температурі протягом 10хв. Реакцію ініціювали додаванням 25 мкл 0,08 мМ лінолевої кислоти. Зміну абсорбції реєстрували при 234 нм з інтервалами в 1 хвилину протягом 10 хвилин при кімнатній температурі, а також реєстрували значення максимальної швидкості (Vmxk) зразка (Vmaxs) і контролю (Vmaxc). В якості стандарту використовувався байкалейн. Інгібіторну активність 5-LOX як відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (5). Значення ICs розраховували за допомогою графіків доза-відповідь.

2.11. Визначення інгібіторної активності ХО. Інгібіторну активність XO визначали згідно з методом, описаним Lee et al. [26] з деякими змінами. Екстракт пшона (10мкл) змішували з 150мкл 50 мМ натрій-фосфатного буфера（pH 7,4） і 20мкл XO（0,15U/мл） та інкубували протягом 10 хв при КТ. Реакцію ініціювали додаванням 20 мкл 0,1 мМ ксантину. Зміну абсорбції реєстрували при 295 нм з мінімальними інтервалами протягом 15 хвилин при кімнатній температурі, а також реєстрували значення Vmax зразка (Vmaxs) і контролю (Vmaxc). Як стандарт використовували алопуринол. Інгібіторну активність XO як відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (6). Значення ICs розраховували за допомогою графіків доза-реакція.

2.12. Визначення інгібіторної активності гіалуронідази. Інгібіторну активність гіалуронідази оцінювали згідно з методом, описаним Sahasrabudhe і Dedhar [27] з деякими модифікаціями. Екстракт пшона (50мкл) змішували з 10мкл гіалуронідази （8400 ОД/мл） та інкубували при 37°С протягом 10 хв. Фермент активували додаванням 20 мкл хлориду кальцію (12,5 мМ) та інкубацією при 37 градусах протягом 10 хвилин. Реакцію ініціювали додаванням гіалуронату натрію (50 мкл) та інкубували при 37°C протягом 40 хвилин. Потім додавали 10 мкл 0,9 М гідроксиду натрію та 20 мкл 0,2 М борату натрію та інкубували при 100°С протягом 3 хв. Після охолодження до кімнатної температури додавали 50 мкл 67 мМ п-диметиламінобензальдегіду та інкубували при 37 градусах протягом 10 хвилин. Значення абсорбції зразка (As) і контролю (Ac) вимірювали при 585 нм. В якості стандарту використовували дубильну кислоту. Інгібіторну активність гіалуронідази як відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (7).

2.13. Визначення інгібіторної активності окисного вибуху. Протизапальні потенціали з точки зору інгібіторної активності окисного вибуху в цільній крові людини та ізольованих поліморфноядерних нейтрофілах визначали за допомогою аналізу хемілюмінесценції, посиленого люмінолом [28, 29] з деякими модифікаціями. Експерименти проводилися в Центрі молекулярної медицини та дослідження ліків доктора Панджвані Міжнародного центру хімічних і біологічних наук Університету Карачі, Пакистан, і інститут має етичний дозвіл на дослідження крові людини від незалежного комітету з етики ICCBS, UoK . №: ICCB-S/IEC-008-BC-2015/Протокол/1.0.

2.13.1. Визначення інгібіторної активності окисного вибуху в цільній крові людини. Людську кров (1 мл) асептично відбирали шляхом пункції вени в гепаринізовану пробірку у здорового добровольця, який не курив, який не приймав жодних ліків або харчових добавок більше одного тижня, і розводили (розведення 1:20) HBSs плюс * (Hanks Balanced Сольовий розчин, що містить кальцій і магній). Екстракт пшона (25 мкл) змішували з розведеною цільною кров’ю (25 мкл) та інкубували при 37°C протягом 15 хв. Потім додавали 25 мкл сироваткового опсонізованого зимозану та 25 мкл люмінолу. Виробництво АФК від окисного вибуху спостерігали протягом 50 хвилин за допомогою люмінометра з повторюваними скануваннями з інтервалами в 30 с і часом вимірювання в 1 с. В якості стандартного препарату використовувався ібупрофен. Відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (8).

де RLU — показання люмінометра в одиницях відносного світла (RLU) для контролю, а RLU — це показання люмінометра в RLU для зразка. Значення ICs розраховували за допомогою графіків доза-відповідь.

2.13.2. Визначення інгібуючої активності окисного вибуху в ізольованих поліморфноядерних нейтрофілах. Цільну кров людини (10 мл) змішували з рівними об’ємами HBSS (збалансований сольовий розчин Хенкса, без кальцію та магнію) та середовищем для розділення лімфоцитів (LSM) і давали еритроцитам осісти протягом 30 хвилин при кімнатній температурі. Потім плазму обережно помістили на LSM і центрифугували при 400 × g протягом 20 хвилин при кімнатній температурі. Супернатант видаляли; еритроцити в отриманому осаді лізували шляхом змішування з холодною деіонізованою водою, змішували з холодним HBSS7 і центрифугували при 300×g протягом 10 хвилин при 4 градусах. Осад двічі промивали, і життєздатність отриманих поліморфноядерних нейтрофілів перевіряли за допомогою методу виключення трипанового синього. Концентрацію клітин доводили до 1×10 градусів клітин/мл. Ізольовані поліморфноядерні нейтрофіли（25 мкл） змішували з екстрактом пшона пальчастого (25 мкл) та інкубували протягом 15 хвилин при 37 градусах. Потім додавали 25 мкл сироваткового опсонізованого зимозану та 25 мкл люмінолу, і протягом 50 хв спостерігали за вибухом окисного виробництва АФК за допомогою люмінометра з повторюваними скануваннями з інтервалами в 30 с і часом вимірювання ls точок. В якості стандартного препарату використовувався ібупрофен. Відсоток інгібування розраховували за допомогою рівняння (8).

2.14. Статистичний аналіз. Дані кожного експерименту були статистично проаналізовані за допомогою програмного забезпечення IBM SPSS Statistics (версія 20), і результати були виражені як середнє ± стандартна помилка (SE). Статистична значущість була встановлена ​​на 95-відсотковому рівні довіри. Для визначення відмінностей між сортами та екстрактами використовували односторонній дисперсійний аналіз (ANOVA) і тест Тьюкі. Для кореляційного аналізу використовувався коефіцієнт кореляції Пірсона.

Класифікація запалення

Гостре запалення: в основному характеризується почервонінням, набряком, болем тощо, тобто запалення в основному складається з реакції судинної системи.

Хронічне запалення: переважно деякі хронічні запальні захворювання, такі як хронічний гастроентерит, хронічний гепатит, рецидивуючі гінекологічні запалення та інші захворювання.

Причина запалення

Будь-який фактор, який може спричинити пошкодження тканин, може бути причиною запалення, тобто фактори запалення можна згрупувати в такі категорії:

(1) Біологічні фактори

Бактерії, віруси, мікоплазми, гриби, спірохети та паразити є найпоширенішими причинами запалення. Запалення, викликане біологічними збудниками, також називають інфекцією. Екзотоксини та ендотоксини, що виробляються бактеріями, можуть безпосередньо пошкоджувати тканини; реплікація вірусу в інфікованих клітинах призводить до некрозу клітин; певні антигенні патогени пошкоджують тканини через індуковані імунні відповіді після інфекції, такі як паразитарні інфекції та туберкульоз.

2) Фізичні фактори

Висока температура, низька температура, радіоактивні речовини, ультрафіолетові промені тощо та механічні пошкодження.

(3) Хімічні фактори

Екзогенні хімічні речовини, такі як сильна кислота, сильний луг і скипидар. Ендогенні токсичні речовини, такі як продукти розкладання некротичної тканини та метаболіти, такі як сечовина, накопичені в організмі за певних патологічних умов.

(4) Стороннє тіло

Чужорідні тіла, що потрапляють в організм людини різними шляхами, такими як різні метали, деревне сміття, пил у повітрі, хірургічні шви тощо, можуть викликати різний ступінь запальних реакцій через свою різну антигенність.

(5) Некротична тканина

Такі причини, як ішемія або гіпоксія, можуть викликати некроз тканин, що є потенційним фактором запалення. Застійні геморагічні смуги та інфільтрація запальних клітин по краях свіжих інфарктів є проявами запалення.

(6) Алергія

Коли імунна відповідь організму ненормальна, це може спричинити неадекватну або надмірну імунну відповідь, спричиняючи пошкодження тканин і клітин і призводячи до запалення. Таких як алергічний риніт, коліт, кропив'янка, туберкульоз, гломерулонефрит та інші захворювання.

Антибіотики є бактерицидними та протизапальними, тривале застосування зруйнує нормальну флору людського організму, вб’є хороші бактерії, спричинить дисбаланс кишкової флори, спричинить різноманітну кишкову дисфункцію та побічні реакції та спричинить вторинну інфекцію, зменшить організм. опір. Крім того, антибіотики в основному метаболізуються в печінці та нирках, а зловживання антибіотиками, швидше за все, призведе до пошкодження функції печінки та нирок. Можна звернути увагу на слова «з обережністю застосовувати хворим з порушенням функції печінки і нирок» в інструкції до всіх протизапальних засобів. Крім того, антибіотики також можуть посилювати алергічні реакції на ліки. В останні роки висока захворюваність на алергічний риніт і алергічну астму пов'язана зі зловживанням антибіотиками.

Експерименти показали, що екстракт Cistanche pipiensis, багатий на ехінакозид, добре покращує дію на коліт; Цистанховий глікозид K і піпозид B мають хороший інгібуючий ефект на секрецію оксиду азоту в клітинах, демонструючи його хороший протизапальний ефект.Цистанхеце китайський лікарський матеріал того ж походження, що й ліки та їжа. Це одна з десяти найкращих китайських лікарських трав у моїй країні. Це скарб із глибин пустелі та природний тонізуючий засіб. Цистанхе Лікарська історія цистанхе налічує майже 2{1}} роки. Вперше це було записано в «Materia Medica Шен Нонга». У 2005 році цистанхе було включено до «Фармакопеї Китайської Народної Республіки» як справжній лікарський матеріал. Цистанхе з давніх часів є хорошим тонізуючим засобом, без будь-яких записів про токсичність, що повністю підтверджує її безпеку.